Western Blot 常見(jiàn)問(wèn)題分析（三）

發(fā)布時(shí)間：2020/6/2 15:41:05 閱讀次數：1642

前兩周的“Western Blot 常見(jiàn)問(wèn)題分析”中,我們主要分享了一些異常的實(shí)驗結果,今天我們來(lái)講講關(guān)于Western Blot實(shí)驗可能會(huì )存在的疑惑.話(huà)不多說(shuō),直接上貨：

1．Western實(shí)驗中,用TBS還是PBS？

選擇合適的緩沖液對于維持一定pH值下蛋白質(zhì)的穩定及保證實(shí)驗的重復性很重要.PBS的緩沖能力強于TBS,TBS在pH7.0以下緩沖能力較弱.一般根據實(shí)驗目的選用合適的緩沖液,如在蛋白純化中進(jìn)行陰離子交換層析,陽(yáng)離子緩沖液選TBS；陽(yáng)離子交換層析時(shí),陰離子緩沖液選PBS.Western blot中使用PBS和TBS均可,根據需要選擇合適的濃度.

2. 沒(méi)有注明可以用來(lái)做Western blot的一抗,可以用來(lái)做Western blot嗎？

不一定,因為有的抗體是識別線(xiàn)性表位的,有的是識別構象型表位,識別構象型表位的抗體不能用于Western blot,因為在Western blot中抗體識別的是完全變性的蛋白質(zhì)抗原,而蛋白質(zhì)抗原的構象型表位變性時(shí)被破壞.

3．做Western每次只加一種一抗,可以同時(shí)加兩種或者多種一抗嗎？

不要同時(shí)加兩種一抗,因為如果結果里面有非特異性信號的話(huà),就說(shuō)不清楚.做Western在同一張膜上檢測目的蛋白和內對照,也是先上目的蛋白的一抗二抗 ECL顯色壓片洗片,漂洗后加內對照的一抗二抗 ECL顯色壓片,洗片.

4. Western用的一抗,單抗好些還是多抗好些？

做Western來(lái)講,理論上單抗比多抗的特異性要好但價(jià)格偏高,一般來(lái)說(shuō)多抗就OK了.用于Western的抗體和用于ELISA的抗體,一般來(lái)說(shuō)用于Western的抗體識別的是氨基酸序列特異性,而可用于ELISA的抗體要看抗原種類(lèi),有些是識別氨基酸序列特異性,有些是識別構象特異性,所以一般根據說(shuō)明書(shū)來(lái)確定.做免疫印跡選擇抗體主要考慮兩個(gè)問(wèn)題,一是所選抗體是否識別凝膠電泳后轉印至膜上的變性蛋白,另一個(gè)是所選抗體是否會(huì )引起交叉反應條帶.

5. 半干轉是否要取膜濾紙膠同樣大小,因為膠大小不一定規則,膜和濾紙會(huì )大一點(diǎn),那樣會(huì )不會(huì )短路？

可以相等,但是如果濾紙膜比凝膠大就比較容易形成短路了,上下兩層濾紙也不能因過(guò)大而相互接觸,這樣會(huì )短路,電流不會(huì )通過(guò)膠和濾紙.轉移前和轉移過(guò)程中看看電壓就行,正常的半干轉是慢慢變高的,結束時(shí)一般是開(kāi)始的1.5-3倍都是正常的.

6. 不能很好的將大分子量蛋白轉移到膜上,轉移效率低怎么解決？

大分子量蛋白傾向于在膠里沉淀,阻礙轉移.可以考慮：在轉膜緩沖液里加入終濃度0.1%的SDS有助于增加轉移效率；轉移緩沖液中加入20%甲醇,甲醇可以降低蛋白質(zhì)洗脫效率,增加蛋白質(zhì)和NC膜的結合能力,防止凝膠變形,延長(cháng)大分子量蛋白轉移時(shí)間；用4℃濕轉過(guò)夜代替半干法轉膜.